芡实组培快繁无菌体系的建立和优化

以芡实的单芽茎段为外植体进行离体培养和植株再生的优化研究.结果表明,以MS+6-BA1.5mg/L+NAA 0.2mg/L作增殖继代培养基为宜,以在MS培养基+蔗糖20g/L+琼脂5.0g/L中添加6-BA(0.1mg/L)+NAA(0.1mg/L)作生根培养基为宜,生根率最高.适当浓度的6-BA对芡实的不定芽增殖有明显的促进作用,6-BA和NAA配合使用可促进芽苗生长,对改善芡实植株组培苗质量有较好的作用.     

甜柿品种"富有"组织培养技术研究

较系统地对甜柿(Diospyros kaki Thunb.)品种"富有"柿组培苗的继代增殖、叶片不定芽再生和生根的培养条件进行研究.试验结果表明:"富有"柿的最佳长期继代培养基为MS ZT2.0 mg/L IAA 0.1 mg/L;高效不定芽再生体系在培养基MS(1/2N) TDZ 0.4 mg/L ZT1.0 mg/L培养30 d之后,转入培养基MS(1/2 N) IAA 0.1 mg/L ZT 2.0 mg/L中,其分化率达到90.3%以上,外植体平均芽数为4.6;生根选取在培养基1/2 MS IBA 1.0 mg/L培养基中暗培养8 d,生根率为93.1%.     

液体培养法提高太子参组培苗质量的研究

受无糖培养技术启示,在太子参组培苗育苗过程中,以液体培养基取代固体培养基,应用纸桥法,以太子参幼苗茎段为外植体,经有效诱导芽分化后转入以蛭石为基质的增殖培养基增殖培养,并诱导生根,成苗后辅以自然光照,通过培养基改进对太子参组培苗质量进行研究。结果表明：茎段在合MS＋0．1mg／LNAA＋0．5～1．0mg／L6-BA＋2％蔗糖的液体培养基滤纸桥上的芽分化率达80％以上。不定芽在以蛭石为基质的MS＋0．1mg／LNAA＋1mg／L6．BA十2％蔗糖的培养基中增殖并生根,生根后的试管苗转到低糖（0．5％）或无糖培养基中,经自然光照培养能得到高质量的试管苗。     

绿巨人工厂化育苗及养护的研究

探索绿巨人组培法工厂化育苗生产工艺。绿巨人组培育苗不定芽诱导最适培养基为MS 6-BA3mg/L NAA0.5mg/L,增殖培最适培养基为MS 6-BA1-2mg/L NAA0.5mg/L,生根培养最适培养基为1/2MS NAA0.5mg/L。养护过程注意遮荫、水肥管理。     

GA对大花蕙兰试管苗增殖的影响

对大花蕙兰的组织培养体系进行了研究。结果表明,在MS＋1．0mg／LBA＋0．4mg／L NAA培养基中培养25d后可诱导侧芽萌发;在MS＋2．0mg／LBA＋2．0mg／L IBA＋1．0mg／LGA培养基上增殖效果最好,增殖系数为3．62;当侧芽3cm左右时转入生根培养基1／2MS＋1．0mg／L IBA上进行生根及壮苗培养。将组培苗移入上层覆盖着树皮的基质中,移栽成活率迭85％左右。     

甜柿十二倍体试管苗嫩枝嫁接方法的研究

以甜柿十二倍体试管苗为试材,借助嫩枝嫁接的方法对甜柿试管苗嫁接进行研究,结果表明:嫁接时保持完整根系,切除子叶,接穗削面长度控制在2～3 mm,嫁接成活率最高;嫁接培养基采用附加IBA 0.3 mg/L ZT 0.44 mg/L AC 3 g/L 蔗糖30 g/L的MS(1/2N)固体培养基,有利于嫁接成活.     

思茅松成熟胚的离体培养

以思茅松(Pinus kesiya var.langbianensis)成熟胚作为培养材料,培养室温度为23±2℃,以1/2MS为培养基,培养基的蔗糖浓度为3%,在6-BA0.3-0.7mg/L+NAA0.5-1mg/L的激素配比范围内,诱导离体胚产生愈伤组织、不定芽和不定根。结果表明,愈伤组织分化率为95.3%;不定芽分化率为46.5%;不定根分化率为4.65%。     

无籽刺梨组培快繁技术研究

通过对无籽刺梨的腋芽离体培养,探索了无籽刺梨腋芽诱导、分化、快速繁殖及生根的最佳条件。结果表明:适宜腋芽诱导的培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L,芽增殖培养基为MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L,生根培养基为1/2MS+IBA0.2mg/L,生根率达到98%,移栽成活率可达90%以上。     

红王子锦带花药诱导再生植株的研究

以红王子锦带花药作为试材,采用离体培养技术,通过对红王子锦带花粉发育的细胞学观测与统计分析,对诱导红王子锦带花粉胚分裂基本培养基、诱导愈伤组织培养基及诱导再生植株培养基等的多种因素进行筛选,建立红王子锦带花药再生植株繁殖体系。结果表明：单核期花药愈伤组织诱导率较高;筛选出最优愈伤组织诱导培养基(MS+2,4-D 0.5 mg·L^-1+KT 2.0 mg·L^-1+蔗糖2%),愈伤组织芽分化诱导培养基(MS+ZT 0.2 mg·L^-1+BA 1.0 mg·L^-1),愈伤组织诱导再生植株诱导培养基(MS+BA 0.5 mg·L^-1+ZT 0.5 mg·L^-1+NAA 0.5 mg·L^-1+蔗糖2%),再生植株继代增殖培养基(WPM+BA 0.5 mg·L^-1+NAA 0.1 mg·L^-1+蔗糖2%)。通过花粉再生植株的诱导实验研究为锦带花育种及新品种选育奠定基础。     

地黄的组织培养及快速繁殖技术

在秋季以健壮的根段作外植体,接种于MS+6-BA1.5mg.L-1(单位下同)+NAA0.2上可诱导出不定芽;30-40d后芽长到2.0-3.0cm转接到MS+6-BA1.5+NAA0.1进行增殖培养,10d后芽苗基部产生芽丛(3-5个);将苗高3.0cm左右、生长健壮的无根苗接种到培1/2MS+NAA0.05上培育出完整植株,即可进行炼苗移栽。     

金钗石斛愈伤组织培养

本文研究了基本培养基和植物生长调节剂对金钗石斛愈伤组织诱导和增殖的影响,并绘制了生长曲线。结果表明,改良MS2（K2HPO．加倍）能获得60％的诱导率,而改良MS。CNH4NO,加倍）的诱导率仅为5％。二者在愈伤组织培养上也表现出显著差异,前者表现良好,说明高浓度的铵能抑制金钗石斛愈伤组织诱导和增殖。MS＋0．5mg／LBA＋O．8Ing／LNAA＋3％蔗糖可获得最高诱导率和增殖倍数,诱导率为70．0％。90d后增殖倍数为23．98。类原球茎培养60～100d时进入对数生长期,重量快速增加。     

莱阳矮樱桃组培快繁中的激素配比研究

利用莱阳矮樱桃顶芽为外植体,进行了组培快繁过程中激素配比研究,结果表明:外植体萌发,芽分化过程最佳激素配比为BA0.3mg/L+IAA0.2mg/L,分化率达98％,状苗培养中最佳激素为IAA0.2mg/L+GA0.5mg/L,当IBA浓度为0.5mg/L时诱导生根效果最好,生根率为99％。     

绿菊花草愈伤组织的诱导

从基本培养基筛选、最佳外植体选择、单激素敏感性试验和最适激素配比试验4个方面对绿菊花草愈伤组织的诱导条件进行了研究.结果表明：1/2MS可作为愈伤诱导培养的基本培养基,而无腋芽茎段最适于愈伤组织的培养,ZT和IBA可较好的启动愈伤组织的形成.在此基础上,确立0.2mg/L ZT＋1.0 mg/L IBA作为诱导茎段形成愈伤的最佳激素配比.     

印度芥菜BjPCS1基因的表达提高烟草对重金属的抗性

在植物体内植物络合素(PC)可与重金属螯合,并进一步转运至液泡贮存,使细胞质的重金属浓度降低,从而达到解毒效果。PC不是基因的直接翻译产物,而是以谷胱甘肽(GSH) 为底物由植物络合素合酶催化而成。将来源于重金属超富集植物印度芥菜(Brassica juncea)的植物络合素合酶基因BjPCS1转入烟草,PCR和Northern结果表明,该基因已经整合到烟草基因组中,并在转录水平上表达。在3种重金属(200mmol/L CdCl₂、400mmol/L ZnCl₂、200mmo/L NiCl₂)胁迫条件下,转基因烟草植株的脯氨酸含量、可溶性糖含量、丙二醛含量、相对电导率和叶绿素含量等指标均优于未转化的对照植株,表明转化BjPCS1基因提高了烟草对3种重金属的抗性,其中转基因烟草抗Cd能力最强,并且转基因烟草的T1代种子在Cd处理的情况下萌发状况明显优于对照。这些结果说明BjPCS1基因在利用基因工程改良植物抗重金属能力和净化环境污染方面,具有良好的应用前景。     

4-羟基环孢素高产菌株诱变筛选及培养基优化

以4-羟基环孢素转化菌Nonomuraea dietziae为出发菌,采用紫外-氯化锂复合诱变的方法,筛选得到一株产量达208 mg/L的稳定遗传菌J263,较出发菌164 mg/L的产量提高26.8%。在此基础上,采取单因素法和响应面法针对诱变菌的发酵培养基碳氮源进行系统优化,并对金属离子的添加进行考察。最终获得最佳的培养基配方（甘油26.5 g/L,糊精11.6 g/L,蛋白胨9.7 g/L,酵母浸粉3.5 g/L,大豆饼粉15.0 g/L,大豆油2.0 g/L,硫酸镁0.40 g/L,硫酸锰0.010 g/L,钼酸铵0.010 g/L）。在最优化条件下,4-羟基环孢素产量可达324 mg/L,较出发菌提高97.6%。     

马来甜龙竹组织培养技术研究初探

通过对马来甜龙竹继代苗组织培养技术的初步研究,选择出马来甜龙竹再生体系的最佳MS培养基是MS+1.5mg/l6-BA+0.5mg/lKT,提出在贵州大力发展马来甜龙竹组培事业是实现绿地系统可持续发展的一种好途径。     

黄草石斛的组培和快速繁殖

利用含不同浓度的不同植物生长调节剂种类的MS培养基对黄草石斛新品系不同外植体进行培养。黄草石斛快速繁殖 ,其外植体以茎尖较适宜。筛选出黄草石斛茎尖分化的适宜培养基为MS +BA0 .5+NAA0 .2 ;诱导芽增殖的最佳培养基为MS +BA0 .75+NAA0 .5;诱导生根培养基为 1 / 2MS+NAA0 .1 +BA0 .2 5。通过组培可快速得到大量株苗 ,株苗在适宜的移栽基质中可以迅速成活。