传统菊花名品的组培复壮及快繁

对十个传统菊花品种进行组织培养，筛选出了适合它们生长的增殖培养基和生根培养基配方，在增殖培养中进行了抗病毒剂复壮处理，提出了一套利用组培进行复壮快速繁殖的简便技术流程，并在养护过程中观察到复壮组培苗比扦插苗具有长势壮，分枝多，花大，抗病性强的特点。     

泡桐脱病毒组培快繁

泡桐(Paulownia sp.)是黄、淮、海平原主要造防风林和用材树种，栽培面积大，木材产量和经济效益高，对当地经济建设起着举足轻重的作用。近年来，由类菌原体MLO(Myeoplasma—Like Organism)所引起的“丛枝病”逐年加重。严重影响了泡桐的生长发育和栽培的经济效益。该研究对脱除泡桐“丛枝病”的方法和技术进行了探讨。     

无机基质加简化的MS营养液快繁甘薯脱毒苗

在缺失甘氨酸，烟酸，VB1，VB6，肌醇的MS培养基中，利用蛭石，蛭石＋珍珠岩（蛭石：珍珠岩分别为2：1、1：1和1：2）、珍珠岩、河沙、土壤七种无机基质代替琼脂组培快繁甘薯脱毒苗的试验，其中以“蛭石“珍珠岩＝1：1”为最佳，降低了脱毒甘薯试管苗的生产成本。     

红掌新品种组培快繁技术研究

本试验完成了红掌新品种A1、A2、A3的组培扩繁技术路线的研究。实验发现，不同品种（基因型），叶片状态，培养基中NH4NO3浓度与叶外植体愈伤组织的诱导和芽的分化有关。在改良MS培养基中，NH4NO，400mg／L结合BA1mg／L，2，4-D0．1mg／L有利于愈伤组织形成和芽分化；以BA0．5mg／L有利于芽的增殖和继代培养；在无激素1／2MS培养基上诱导生根，生根率达100％。本技术路线已进入种苗商品化生产阶段，可以解决红掌新品种推广的种苗来源问题。     

艾纳香种苗快繁技术研究

以艾纳香幼茎段为外植体,研究激素对艾纳香诱导愈伤组织、继代增殖和生根的影响,建立了艾纳香试管苗快繁体系,并优化获得其最佳增殖初代培养基为MS+ 6-BA 2.0 mg/L;最佳增殖继代培养基为MS+6-BA 2.5 mg/L+NAA 0.3 mg/L;最佳的生根培养基为1/2 MS+ NAA 0.5mg/L;生根苗移栽于泥炭土与珍珠岩比为3∶1的混合营养杯中,成活率可达92.16％.     

石斛兰组培快繁研究初探

在石斛兰组培快繁过程中，6-BA和NAA对类原球茎的诱导有重要作用。6-BA、KT和NAA的合理组配对类原球茎的增殖和苗的分化有促进作用。IBA和添加物香蕉是石斛兰的生根和壮苗的关键。     

蝴蝶兰无菌播种快繁技术

蝴蝶兰无菌播种快繁技术的研究工作开始于2000年，经过3a的试验研究，掌握了蝴蝶兰种子组培快繁技术，包括种荚的采收适期、材料消毒、适宜的培养基配方、播种繁殖与壮苗生根以及试管苗移栽等方面，并成功繁育数万棵蝴蝶兰小苗，取得了一定的经济效益。     

迷你型黄瓜的快繁技术研究

为了降低迷你型黄瓜的种苗成本,对迷你型黄瓜的不定芽的快繁技术进行了研究．以MS为基本培养基,研究了不同的激素处理对迷你型黄瓜离体子叶不定芽的诱导、增殖与生根的影响．结果表明：以MS＋0．3mg／L6-BA＋0．05mg／LIAA为培养基诱导不定芽的效果较好,以MS＋0．2mg／L6-BA＋0．05mg／LIAA为培养基的增殖效果较理想,以1／2MS＋0．2mg／LIAA为培养基的生根效果较好,生根率达98％,且根系发达．     

小叶章组培快繁体系的研究

以野生小叶章幼嫩茎段为外植体,研究MS对外植体生长的影响。通过正交试验设计,研究不同种类及浓度配比激素对丛生芽增殖和生根的影响。表明小叶章茎段用75%酒精消毒30 s,再经0.01 L汞溶液浸泡4 min的灭菌效果较好;茎段直接诱导不定芽的最适宜培养基为MS+0.05 mg/L KT+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L+TDZ 0.1 mg/L NAA,诱导率可达87.44%;最佳继代增殖培养基为MS+0.1mg/L KT+0.5 mg/L 6-BA+0.05 mg/L TDZ+0.1 mg/L NAA,增殖系数可达5.76;生根最适宜培养基为0.5MS+2.0 mg/L NAA,生根率为93.33%。     

丽格海棠巴科斯品系的组培与快繁研究

以丽格海棠巴科斯品系叶片为材料,进行外植体的诱导培养、不定芽继代增殖培养、无根苗生根培养等组织培养技术研究,探索其适宜的培养基和培养条件．结果表明：在MS＋BA1．0mg／L＋NAA0．2mg／L培养基上丽格海棠叶片诱导不定芽效果最好;在MS＋BA0．1mg／L＋NAA0．0lmg／L培养基上继代增殖效果较好;在1／2MS＋NAA0．2mg／L培养基生根诱导培养效果较好．苗高6cm可出瓶过渡移栽,并保持90％以上的空气湿度,温度为（25±3）℃,成活率最高．     

文心兰(Oncidium)微体快速繁殖技术的研究

采取文心兰花梗作为外植体进行离体快速繁殖的研究，以MS为基本培养基，筛选出适合于萌芽出苗、继代培养和生根培养的培养基配方，为实现文心兰工厂化生产打下基础。     

蝴蝶兰的快速繁殖研究

通过诱导残败花梗上的休眠芽萌发,以萌发的幼芽为外植体进行组织培养,建立了蝴蝶兰(Phalae nopsishybrid)的无菌繁殖体系。诱导休眠芽萌动的培养基为MS+3.0mg/L 6-BA+3%蔗糖+0.6%琼脂;诱导多芽的培养基为MS+5.0mg/L 6-BA+3%蔗糖+0.6%琼脂+0.2%活性炭;生根壮苗培养基为1/2MS(只减无机物)+0.1mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA+3%蔗糖+0.6%琼脂+10%香蕉+0.2%活性炭。     

药用、食用、观赏用百合组培快繁研究进展

百合是商品价值很高的植物品种,有药用、食用、观赏等用途．应用植物种苗组织培养快速繁殖技术,可在短期内生产大量优质的百合种苗．现阶段国内广泛开展了对百合的组织培养和植株再生途径的研究,百合的组织培养研究已较为成熟,多种外植体都可诱导分化出植株．本文从外植体和基本培养基的选择、激素对初代、增殖及生根培养的影响、组培苗移栽等方面,综述了近年来国内的药用、食用、观赏用百合组培快繁研究的现状．     

珙桐快速繁殖技术研究

以野外珙桐抽出的嫩梢为培养材料进行快速繁殖研究,结果表明:茎段直接诱导丛生芽的适宜培养基为WPM+NAA0.05 mg/L+6-BA2.0 mg/L+GA31.0 mg/L+AC 1.0 g/L;生根最佳培养基为White+IBA2.0 mg/L+6-BA1.0 mg/L+AC 0.5 g/L,在此条件下,根发育良好,植株健壮。     

华芦荟的组织培养与快速繁殖

以华芦荟（Aloe chirtensis（Haw．）Baker）的茎切段为材料，接种于加不同植物激素组合的MS培养基上，获得大量的再生植株。实验结果表明，诱导芽的生成，使用MS＋6-BA3mg／L＋NAA0．1mg／L培养基为最佳，快速繁殖阶段使用MS＋6-BAlmg／L＋NAA0．2mg／L培养基为最佳，诱导生根阶段使用1／2MS＋IBA2．0mg／L培养基为最佳，16～28d内可以长出2～6每根。     

澳洲袋鼠爪花种苗的组培快繁试验

以袋鼠爪花基部侧芽为外植体,进行了组织培养与快速繁殖技术的研究.结果表明:最佳诱导培养基为1/2 MS+BA 1.0 mg.L-1+NAA 0.05 mg.L-1+Ad 1‰+卡拉胶7 g.L-1+蔗糖20 g.L-1;最佳增殖培养基为1/2 MS+0.5 mg.L-1 BA+0.05 mg.L-1 NAA+Ad 1‰+卡拉胶7 g.L-1+蔗糖20 g.L-1;最佳生根培养基为1/2 MS+0.5 mg.L-1NAA+Ad 5‰+卡拉胶7 g.L-1+蔗糖20 g.L-1.炼苗后,移入泥炭和沙比例为2:1的基质中,移栽成活率高达90%.     

何首乌的快速繁殖技术

文章对何首乌的快速繁殖技术进行了研究。结果表明:采用MS+6-BA2.0mg/L+IBA0.1mg/L的培养基对诱导带侧芽茎段芽的分化效果最好,通过继代培养,出现芽增殖现象。诱导生根,以1/2MS+IBA0.25-0.5mg/L和1/2MS+NAA0.25-0.5mg/L效果较好。     

爆仗竹组织培养快繁技术研究

以爆仗竹顶芽和带腋芽的茎段为外植体,研究不同激素组合及其浓度对爆仗竹组织培养的影响。结果表明:不同激素组合对爆仗竹芽的萌动、分化及生根培养有明显的影响,其中MS 6-BA2．0mg／L NAA0．8mg／L最适宜外植体芽的萌动;MS 6-BA1．0mg／L NAA0．5mg／L对丛生芽的继代增殖效果最好;MS NAA0．6mg／L对生根诱导效果最佳,生根率达100％。     

凤尾鸡冠的离体快繁及瓶苗开花探究

应用植物离体快繁培养技术研究凤尾鸡冠瓶苗开花技术,结果表明:凤尾鸡冠的种子用0.1%的HgCl2灭菌8 min效果最好,成活率达到90%;最佳的增殖培养基配方为MS+NAA 0.1 mg·L-1+6-BA 1.0 mg·L-1+蔗糖20 g·L-1+琼脂10 g·L-1;经过壮苗后的植株在MS+PP3330.5 mg·L-1+NAA 0.01 mg·L-1+蔗糖20 g·L-1+琼脂10g·L-1培养基上培养,开花率最高,为81%;适当减少MS培养基中氮含量,能提高凤尾鸡冠瓶苗开花率;光照强度为3 000 Lx时,瓶苗开花率最高。     

皱叶忍冬的组织培养与快速繁殖初步研究

以宜州当地主要金银花品种皱叶忍冬的茎段为外植体材料,于MSt和1/2MS附加不同激素配比的基本培养基上,探讨丛生芽诱导及生根诱导的条件。试验结果表明：丛生芽诱导和继代培养的培养基为MS 6-BA0．5mg／L IBA0．05mg／L,生根培养基为1/2MS IBA1．0mg／L NAA0．05mg／L．