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To explore the university experiences of students with learning disabilities (LD), 63,802 responses to the 2014 Student Experience in the Research University Survey were analyzed. Compared to other students, those with self‐reported LD (5.96 percent) had difficulty with assignments and had more obstacles caused by nonacademic responsibilities and imposed by their skill levels. Students with self‐reported LD sensed more bias toward people with disabilities on campus, and they were less satisfied with their overall experience. Interactions between disability status and age suggested even more challenges for older students who self‐reported LD. Approximately one‐third of students who self‐reported LD received accommodations. The rate of accommodations was higher among individuals who were wealthy, who lived alone, and who were out‐of‐state students. Compared to students who self‐reported LD but reported no accommodations, those with accommodations had more contact with faculty and less difficulty with assignments.  相似文献   
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Cell-cell interactions play a key role in regeneration, differentiation, and basic tissue function taking place under physiological shear forces. However, current solutions to mimic such interactions by micro-patterning cells within microfluidic devices have low resolution, high fabrication complexity, and are limited to one or two cell types. Here, we present a microfluidic platform capable of laminar patterning of any biotin-labeled peptide using streptavidin-based surface chemistry. The design permits the generation of arbitrary cell patterns from heterogeneous mixtures in microfluidic devices. We demonstrate the robust co-patterning of α-CD24, α-ASGPR-1, and α-Tie2 antibodies for rapid isolation and co-patterning of mixtures of hepatocytes and endothelial cells. In addition to one-step isolation and patterning, our design permits step-wise patterning of multiple cell types and empty spaces to create complex cellular geometries in vitro. In conclusion, we developed a microfluidic device that permits the generation of perfusable tissue-like patterns in microfluidic devices by directly injecting complex cell mixtures such as differentiated stem cells or tissue digests with minimal sample preparation.  相似文献   
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